Часть I. Основные принципы и особенности аспирации, подготовки и пересадки больших объемов собственной жировой ткани

• Г.М. Саруханов, пластический хирург, врач высшей категории, кандидат медицинских наук

• И.С.Кочнева, пластический, челюстно-лицевой хирург

• М.Г. Левицкая, пластический хирург

• Клиника эстетической хирургии «Абриелль»

• Санкт-Петербург, Россия

Понятие «липоскульптура» в хирургическом аспекте подразумевает формирование новых контуров тела за счет удаления из определенных зон избыточных отложений жировой ткани и ее использование (липофилинг) в качестве наполнителя зон с дефицитом объема. Описаны все этапы операции, начиная от отбора пациентов, предоперационной разметки, до техники и особен ностейизвлечения, подготовки и введения жировой ткани в ре ципиентные зоны. Статья основана на анализе данных по проведению операций липофилинга молочных желез, голеней, ягодиц, коррекции ятрогенных деформаций тела в общей сложности 214 пациентам. Сроки наблюдения составили от 6 месяцев до 7 лет.

Ключевые слова:

липофилинг, липоскульптура, пересадка аутожи ра, метод

Sarukhanov G.M., Kochneva I.S., Levitskaya M.G. Liposculpture as a method of correction of body contours. Part I. Main principles and peculiarities of aspiration, preparation and grafting of large amounts of host fat tissue // Plastic Surgery and Cosmetology. 2013(4)

The term «liposculpture» means formation of new body contours due to removal from definite areas of deposits of excessive fat tissue and its use as a filler (lipofilling) for areas with insufficient body volume. The authors consider all the stages of the surgery in detail, beginning with the selection of patients, pre-surgical marking, technique and peculiarities of removal, preparation and introduction of fat tissue into recipient’s areas. The article is based on the analysis of data on Т
lipofilling of mammary glands, lower lectures, buttocks, correction
of iatrogenic deformations of body on a total of 214 patients. The observation period made up from 6 months to 7 years.

E-mail: gsarukhanov@yandex.ru

1 ВВЕДЕНИЕ

Трансплантация жировой ткани насчитывает более чем 100-летнюю историю [1]. Метод переживал взлеты и падения, ажиотаж и забвение, вызывал восхищение и негативные реакции. На сегодняшний день пересадка жира стала революцией в пластической хирургии. Современные представления и концепции значимо отличаются от тех, чтобы были приняты 15–20 лет назад. Усовершенствовались принципы аспирации жировой ткани, обработки, методы и техника введения жира [2–4]. У хирургов появилась возможность использовать самые современные аппараты для липоаспирации при условии максимальной сохранности жировых клеток (водоструйная и Vaser липосакция, вакуумные шприцевые липографтеры с закрытой системой для сбора и обработки жира) [5–7], постоянно разрабатываются и совершенствуются канюли и т.д. Наконец, научились выделять из жировой ткани стромально-васкулярную фракцию, содержащую наряду с клетками крови, фибробластами, перицитами и эндотелиальными клетка ми стволовые (прогениторные), или стромальные клетки жировой ткани (СКЖТ), добавление которых в подготовленный для введения липоаспират улучшает приживаемость и срок жизни аутотрансплантата (аппарат Cytori, USA) [8]. Появляется множество сообщений о применении жира в регенеративной медицине (для лечения ожогов, рубцов, контрактур, реконструкции молочных желез после мастэктомии, восстановления функции голосовых связок при афонии и многого другого) [1].

Определенное внимание заслуживает активно раз вивающееся направление в пластической хирургии под названием «липоскульптура», (body contouring, reshaping). Под этим термином понимают сочетание таких операций как липосакция и липофилинг. Цель данной операции — формирование «идеальных» кон туровтела за счет устранения излишков жировых отложений в одних зонах и наполнение полученным при этом жиром зон с дефицитом объема (молочные железы, голени, ягодицы и др.). Появилось множество публикаций, касающихся ремоделирования тела с помощью аутожира для подчеркивания контура и увеличения объема мышц (грудная и дельтовидная мышцы, «кубики» брюшного пресса, бицепсы, трицепсы и пр.) [9–12]. Большинство пластических хирургов, использующих в своей практике совре менный метод пересадки жировой ткани, солидарны в том, что она является «идеальным» материалом (филлером) для увеличения объема мягких тканей [13–16]. Особенно, если речь идет о необходимости значительного увеличения объема. Пациенты отмечают свою довольно высокую удовлетворенность такой процедурой с низким процентом побочных эффектов и осложнений и после частичного рассасыва ния жирового аутотрансплантата считают результаты наиболее естественными и перманентными [17].

2 ОТБОР ПАЦИЕНТОВ

Основными критериями выбора пациента для проведения липоскульптуры и липофилинга были: желание выполнить/улучшить коррекцию определенных областей тела (реципиентой зоны) с помощью липофилинга и наличие донорских зон с адекватным объемом жира. Хотелось бы отметить, что по мере накопления опыта и совершенствования техники аспирации мы научились «добывать» необходимое для липофилин га количество жировой ткани даже у очень «стройных» пациенток с весом до 49–50 кг (при средних значениях роста 155–165 см). С учетом поставленной цели — выполнения липоскульптуры — мы старались в первую очередь забирать жир из мест с наиболь шимижировыми отложениями — так называемыми «жировыми ловушками». У женщин это области «га лифе», талии, фланков, передней стенки живота, внутренней поверхности бедер и т.д. Безусловно, необходимо учитывать эластичность и тургор кожи, наличие и выраженность проявлений целлюлита. Так, например, мы с осторожностью стараемся за бирать жир из тех участков тела, где тургор кожи резко понижен, а соединительно-тканная подкожная система перерастянута и запустевает (так называ емые бариатрические пациенты). В шутку мы назы ваем такихпациенток «кисельными барышнями» из-за выраженной подвижности и растянутости «за пустевшей» кожно-жировой прослойки, напоминающей по консистенции кисель или желе. Обращаем особое внимание на наличие у пациенток рубцовых деформаций в области планируемого липофилинга, так как это наиболее сложная для коррекции ситуация из-за вероятной необходимости проведения повторных корректирующих операций. Конечно, для оптимального выбора донорских зон важно знать, в какой именно части тела планируется проведение липофилинга (молочные железы, голени или ягоди цы). Большое значение при выполнении такого рода операций имеет настрой пациентов, адекватность и реалистичность ожиданий, осведомленность обо всех возможных осложнениях и информированность о вероятности повторных сессий липофилинга. Кро метого, для наглядности и оценки реальных возможностей липофилинга мы с помощью программы VPSS (Virtual Plastic Surgery Software) выполняем предоперационное виртуальное моделирование результата операции с учетом пожеланий пациентки. Если желаемый результат может быть достигнут с помощью липофилинга и липоскульптуры, и данные объективного обследования и осмотра позволяют пациентке стать кандидатом на проведение процедуры, то она подписывает информированное согласие.

3 ПРЕДОПЕРАЦИОННАЯ ПОДГОТОВКА

Всем пациентам выполнялись стандартные лабораторные исследования согласно требованиям к проведению общей анестезии, включая УЗИ молочных желез (при липофилинге молочных желез), УЗ-допплерографическое исследование вен нижних конечностей и консультации узких специалистов при наличии сопутствующей патологии. Осуществлялась общая или эпидуральная (спинальная) анестезия в зависимости от вида операции и обработки тех или иных областей тела. Учитывая большие объемы аспирации жировой ткани, до начала операции пациентке проводилась внутривенная инфузия подогретых до температуры тела растворов Рингера, 0,9% физиологического раствора и т.д. в объеме до 1 литра. Профилактика тромбоэмболии состояла
в применении низкомолекулярных гепаринов, внутривенном введении кортикостероидов и применении пневматических «сапожек» (рис. 1).

Кроме того, однократно профилактически внутривенно вводился 1 г антибиотика цефалоспоринового ряда III поколения. По возможности использовали специальное одеяло с подогревом для профилактики переохлаждения, а также подкладывали специаль ныеподушечки под костные выступы для профилактики пролежней. Выполняя липоаспирацию, мы старались не превышать допустимый безопасный объем (до 3–4 л) изъятого детрита из-за опасности большой кровопотери (в среднем, она составляет 20–25% от общего объема аспирата) и нарушения водно электролитного баланса. Средняя продолжительность такого рода операций составляет от 1,5–2,0 (липофилинг голеней, молочных желез) до 4–6 часов (фэтграфтинг ягодиц) в зависимости от объема удаляемого и вводимого жира.

4 ТЕХНИКА ОПЕРАЦИИ

Пересадка жировой ткани выполняется в 3 последовательных этапа: 1 — аспирация жировой ткани из соответствующих донорских зон; 2 — обработка полученной жировой ткани (липоаспирата) с целью устранения жирной надосадочной массы (масла), крови и избытка раствора; 3 — введение очищенной жировой фракции с помощью трехмерной техники реимплантации.

Предоперационная разметка

Фотографирование пациентов проводилось по принятым в клинике стандартам в определенных для выполнения каждого вида операции ракурсах. Разметка, в том числе и маркировка зон липосакции, наносится в положении пациентки стоя после тщательного с ней согласования и обсуждения (рис 2). Зоны липофилинга обычно заштриховываются, обозначаются наружные границы областей аспирации жира и помечаются крестиком. Отдельно помечаются места наличия рубцовых деформаций, зоны депрессий, учитывается асимметрия формы или объема. Обязательно проводится фотографирование пациентки с нанесенной разметкой. В некоторых случаях мы вывешиваем в операционной исходные фотографии пациентки, фото с нанесенной разметкой и предоперационным моделированием. Это помогает действовать по заранее намеченному плану. По нашему мнению, область аспирации жира не влияет на степень приживаемости жировых клеток, что подтверждается данными литературы: не было выявлено существенных различий в выживаемости жировых клеток, взятых из различных зон (живот, талия, фланки, бедра, внутренняя поверхность бедер и коленей) [18]. Тем не менее, Padoin с соавт. сообщили, что выявили повышенное содержание стволовых клеток в жировой ткани, взятой из нижней части живота, по сравнению с жировой тканью, взятой из других анатомических областей [19].

Инфильтрация зоны аспирации

В зоне предполагаемой аспирации жировой ткани инфильтрация через проколы (разрезы) длиной до 3–4 мм производится канюлями 3 мм с большим количеством отверстий (10), в соотношении раствора 1:1 или 1:1,5 по отношению к предполагаемому объему липоаспирата. Для равномерного и быстрого введения раствора используется специальный насос, позволяющий контролировать скорость и объем вводимой жидкости (рис. 3).

Для профилактики переохлаждения пациента мы применяем подогретый раствор. Аспирацию жировой ткани начинаем через 20–30 минут после введения жидкости. Состав тьюмесцентной жидкости: на 1000 мл предварительно подогретого до температуры тела 0,9% физиологического раствора приходится одна ампула адреналина (1:100 000). Количество анестетика в растворе зависит от вида анестезии: при внутривенной седации — 50 мл, при проведении общей или эпидуральной (спинальной) анестезии — 20,0 мл 1% лидокаина. Адреналин и лидокаин использует ся для снижения болевого ощущения и уменьшения кровоточивости.

Аспирация жировой ткани

Осуществляется под контролируемым постоянным низким отрицательным давлением (не более 230–280 мм. рт. ст). Для этого в нашей клинике используется закрытая система: стерильная емкость герметично закрыта специальной крышкой с тремя штуцерами, через которые подсоединяются три шланга: один — к отсосу, который поддерживает постоянное низкое давление и два других шланга присоединяются к канюлям для аспирации жира.

В результате ускоряется процесс аспирации, так как одновременно могут работать два хирурга (рис. 4). Мы предпочитаем в основном использовать канюли диаметром 2,7 и 3,0 мм с большим количеством режущих отверстий на кончике (рис. 5). По мнению R.Khouri [7], для эффективной аспирации жира канюлей с одним отверстием требуется отрицательное давление порядка 400–500 мм. рт. ст., тогда как множество отверстий (9) позволяет забирать жир при давлении 240 мм. рт. ст. Канюли диаметром 4,0 и 5,0 мм можно использовать только при выполнении липофилинга ягодиц. Это связано с тем, что для липофилинга МЖ и голеней используется чистый жир без элементов соединительной ткани, поскольку в отдаленном послеоперационном периоде примеси могут имитировать уплотнения. При липофилинге ягодиц допускается использование «плохо» очищенного жира.

Желательно, чтобы диаметр отверстий на канюле для взятия жира соответствовал диаметру отверстий на канюле для введения жира. Если отверстие меньше, то в процессе введения жира будет создаваться избыточное давление и наоборот, если больше — жир будет выходить большими порциями (рис. 6).

По данным литературы, посвященной изучению и сравнительной оценке влияния методов аспирации, диаметра канюлей и величины отрицательного давления на сохранность жизнеспособных адипоцитов и стволовых клеток, не было выявлено статистически значимой разницы и не получено доказательств преимущества того или иного метода [20–25]. Отмечено лишь, что методы, при которых используется липоаспирация под низким давлением с помощью большего диаметра канюль, по всей видимости, увеличивают жизнеспособность адипоцитов.

Взятие жировой ткани желательно осуществлять в первую очередь из областей с наибольшими локальными жировыми отложениями — «ловушками», а разрезы располагать — в максимально «скрытых» участках кожи.

Обработка и подготовка жировой ткани. Обзор литературы

Единого мнения о преимущественном способе подготовки жира на сегодняшний день нет. Есть разновидности методов, предложенных известными пластическими хирургами. Метод центрифугирования, предложенный S. Coleman [4], целесообразен при липофилинге небольшого объема — например, лица или небольших участков тела. Но вряд ли этот метод разумен при необходимости обработать большие объ емы жировой ткани, так как требует большой затраты времени, оборудования (центрифуги), расходных материалов (шприцев и пр.) и специально обученного персонала (рис. 7).

Липофилинг молочных желез, голеней, ягодиц и др. требует использования больших объемов жира, поэтому применяются методы промывания, процеживания или мануального центрифугирования. В частности, C. Mendieta использует метод промывания и процеживания через сито (рис. 8) [26]. R. Gonzales процеживает и отжимает жир через марлю, а «сухой» жир собирает лопаточкой (рис. 9). R.K. Khouri использует аппаратное или ручное центрифугирование в сочетании со специальным липографтером и закрытой системой (рис. 10).

M.T. Boschеrt с соавт. изучали центрифугированный жир, полученный после 20 липосакций [29]. Результаты показали, что после центрифугирования в нижнем слое стабильно содержится наибольшее количество жизнеспособных клеток, и центрифугирование более 2 минут не увеличивает количество и долю жизнеспособных адипоцитов.

J.G. Rose с соавт. проводили количественный анализ жизнеспособных адипоцитов после различной обработки жира: промывания, центрифугирования и седиментации (осаждения) [30]. Результаты показали, что количество высокоактивных адипоцитов и адипоцитов с сохраненными ядрами в поле зрения было значительно больше в образцах после седиментации.

R. Khater с соавт. проводили сравнение центрифугированного, нецентрифугированного и промытого жира у 51 пациента [31]. Через год они выявили лучшие клинические результаты у пациентов с промытым жиром. R.J. Rohrich с соавт. обнаружили, что не было существенного различия в жизнеспособности клеток между центрифугированными (500 g в течение 2 минут) и нецентрифугированными образца ми [32].

В 2010 году A. Conde-Green с соавт. опубликовали исследование относительно влияния декантации (процеживания), промывания и центрифугирования со скоростью 3000 об./мин. в течение 3 минут на адипоциты и стволовые клетки, содержащиеся в липоаспирате [33]. Количество адипоцитов было значительно больше в процеженном, чем в центрифугированном жире, в котором обнаружено больше поврежденных адипоцитов. Те же авторы расширили свои исследования по оценке воздействия центрифугирования на клеточный состав и жизнеспособность адипоцитов в аспирате, используемом для пересадки [34]. Автор констатирует, что для увеличения приживаемости трансплантатов при использовании центрифугирования полученный осадок должен быть смешан со средним слоем липоаспирата.

Таким образом, совокупность доказательств не подтверждает преимущество одной технологии обработки жировой ткани над другой. Однако на основании анализа нескольких статей можно сказать, что при скорости центрифугирования более 3000 об./мин. (1200 g) происходит большее повреждение клеток [35].

Собственный метод подготовки жировой ткани

В нашей клинике принят метод промывания, отстаивания (седиментации и удаления излишков жидкости, элементов крови и разрушенных адипоцитов, представляющих собой слой «масла» над интактным жиром. Мы не промываем до «чистых вод» и «ярко-желтого» жира, так как считаем, что в «розовом» жире остается больше стволовых клеток. Об этом неоднократно говорил и S. Coleman на своих презентациях.

Промывание. Из большой стерильной емкости в большие шприцы 150,0 мл набирается до половины липоаспирата. В этот же шприц набирается физиологический раствор до полного объема. Довольно быстро жир отстаивается и через носик шприца сливается избыточная жидкость и элементы крови. Специальными стрипами из впитывающего материала удаляется сверху слой «масла». Очищенный жир перекачивается через специальный переходник в шприцы на 10,0 и 20,0 мл и после этого готов к введению (рис. 11). В процессе подготовки с жиром следует обращаться очень бережно, он практически не соприкасается с воздухом. Операционная бригада (два хирурга и операционная сестра) работает одновременно и параллельно: пока хирурги выполняют сбор жира, операционная сестра проводит обработку уже полученного детрита. Благодаря слаженным действиям и отработанному методу ни на одном этапе операции мы не теряем драгоценного времени.

Количество подготовленного жира обязательно протоколируется и документируется (рис. 12).

Введение жира в реципиентную зону

Перед началом липофилинга производится инфильтрация тканей раствором канюлями с множеством отверстий диаметром 2,0 мм (рис. 3а). Состав тьюмесцентной жидкости тот же, что и для инфильтрации тканей перед взятием жира. Количество жидкости примерно соответствует предполагаемому объему липофилинга. По нашему мнению, инфильтрация тканей реципиентной зоны способствует, во-первых, увеличению ее площади; во-вторых — позволяет более равномерно, несколькими слоями ввести больший объем жира и, в-третьих — предварительное введение адреналина в составе инфильтрирующей жидкости вызывает спазм сосудов, что способствует профилактике выраженных кровоизлияний и гематом. К тому же, в «наводненных» тканях канюля движется мягко, без особых усилий.

Затем через небольшие проколы размером 1–2 мм при помощи специальных канюль различной формы (прямые и изогнутые), диаметром 2,0 2,4 и 3,0 мм, длиной 12 или 15 см (Coleman type I, V-dissector, Khouri, Tulip и др.) в реципиентные зоны вводится жир (рис. 13). Предпочтение в выборе того или иного вида инъекционных канюлей зависит от специфичности тканей реципиентной зоны (молочные железы, голени, ягодицы или рубцовые ткани).

Среди многочисленной литературы по данной теме имеются всего несколько исследований, посвященных сравнительной оценке того или иного вида канюлей. Одно из них — Z. Ozsoy с соавт., который сравнил три разных диаметра канюли Coleman для введения [36]. Авторы обнаружили, что жизнеспособность адипоцитов была значительно выше при применении канюлей диаметром 2,5 мм по сравнению с канюлями меньшего диаметра (1,6 или 2,0 мм).

В другом исследовании M. Erdim с соавт. сравнивали три типа канюлей для введения: 14, 16 и 20G. Они показали, что нет никаких существенных различий в отношении жизнеспособности жировых клеток и зависимости от диаметра канюли для введения [37].

Жировая ткань представляет собой клетки с тонкой мембраной, поэтому с трансплантатом необходимо обращаться максимально бережно. Мы не используем центрифугирование по двум причинам.

Во-первых, потому, что во время центрифугирования или процеживания происходит дополнительная травма жировых клеток, а также увеличивается время соприкосновения с воздухом. Во-вторых, потому, что «сухой» жир менее равномерно распределяется в тканях при введении. Мы вводим «жидкий» жир, он распределяется однородно, жидкость всасывается в течение ближайших 3–4 часов. По нашему мнению, введение «жидкого» жира является профилактикой возникновения неровностей в послеоперационном периоде. Подобного мнения придерживаются не которые авторы, чьи доклады звучали на международном конгрессе — Anti-Aging Medicine (AMWC 2013, Monaco) [38].

Основные современные принципы введения жи ровой ткани (рис. 14).

1. Соответствие количества введенного жира объему реципиентной зоны. Бесполезно вводить большое количество жира в ограниченное пространство.

2. Равномерность введения и четкий контроль дозы.

3. Перекрестная «выкладка» бусинок жира по схеме «веер».

4. Послойное введение.

5. Введение только на ретроградном (обратном) движении канюли.

Мы придерживаемся вышеописанных принципов. Однако не отрицаем, что и введение большего количества жировой ткани за один проход канюли может приводить к стабильным результатам и не вызывать каких-либо осложнений. Этот факт достаточно убедительно продемонстрирован на последних конференциях с участием Деннниса Хаммонда, Джованни Ботти, Константина Мендиеты и др. По-видимому, в руках мастера хороши все методы. Лишь дальнейшие отдаленные наблюдения за результатами подобных операций смогут выявить преимущества и недостатки той или иной техники.

В области введения должно быть достаточное пространство и хорошее кровоснабжение для лучшего приживления жира. Вводится одинаковое количество жира в симметричные зоны (при отсутствии выраженной изначальной асимметрии). Слои введения жировой ткани зависят непосредственно от особенностей анатомического строения реципиентной зоны (молочные железы, голени, ягодицы и др.).

5 ОБСУЖДЕНИЕ

За последние 20 лет значительно возрос интерес к использованию собственного жира в качестве трансплантата для реконструкции дефектов мягких тканей лица, а также для омоложения лица при липодистрофии, омоложения кистей рук, при атрофии мягких тканей нижних конечностей, для увеличения и коррекции формы ягодиц, в эстетической или ре конструктивной хирургии груди [1]. На сегодняшний день существует большой выбор технических вариантов аспирации и пересадки жира. В данной статье, представляя собственный опыт, мы обращаем внимание на малочисленность доказательных клинических исследований по липофилингу, как в отношении оптимальности выбора донорской области и процедуры аспирации, так и обработки и техники инъекций жира.

Мы не касались вопросов влияния пересадки жира на регенерацию окружающих тканей за счет присутствия стволовых клеток (СКЖТ, ADSCs, adipose-derived stem cells) [39–43], которые обладают ангиогенетическими, антиоксидантными и антиапоптозными свойствами [44–50]. Аспирированный жир (стромально-васкулярная фракция) содержит различные типы клеток: зрелые адипоциты, стволовые клетки жировой ткани (СКЖТ), перициты, фибробластоподобные и эндотелиальные клетки [51]. Процент популяции различных типов клеток может значительно отличаться у различных пациентов. Влияние способа аспирации и подготовки жира на жизнеспособность клеток до сих пор неизвестно, так же, как до конца неизвестна роль этих типов клеток в регенеративных процессах. Исследования в этом на правлении активно ведутся во всем мире.

6 ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Опубликованные в литературе данные о методах забора, подготовки и введения жировой ткани, свидетельствуют о том, что до сих пор не выработан единый алгоритм действий, учитывающий все факторы, влияющие на успешную, устойчивую и надежную трансплантацию жира. Но все авторы подчеркивают, что даже если в основе любого существующего метода лежат теоретические представления, правомочность его проверяется только клинической практикой.

Несмотря на разнообразие существующих методов липофилинга мы считаем лучшим тот метод, с по мощью которого можно достигнуть оптимального эстетического результата. Опираясь на собственный многолетний опыт в липофилинге и липоскульптуре различных областей тела, мы предлагаем свой отработанный метод работы с большими объемами жировой ткани. Для воплощения данного метода в практическую деятельность не требуется больших материальных затрат (дорогостоящих аппаратов для липосакции, центрифуг, специальных липографтеров и т.д.) и дополнительного привлечения среднего медицинского персонала. Применение специальной стерильной емкости с крышкой, снабженной не сколькими разъемами для одновременной работы двух хирургов, позволяет значительно ускорить процесс аспирации больших объемов жировой ткани и сократить время операции. Оптимальными и эффективными канюлями для сбора больших объемов жировой ткани даже у пациентов с умеренными жировыми отложениями, по нашему мнению, являются канюли диаметром 2,7 и 3,0 мм с большим количеством отверстий на конце. Аспирация жировой ткани при низких параметрах отрицательного давления (до 280–300 мм. рт. ст) более безопасна в отношении профилактики неровностей контура. Также мы считаем, что лучше использовать жировую ткань как стромально-васкулярную фракцию с видимой примесью клеток крови, включающую фибробласты, эндотелиальные клетки и преадипоциты — стволовые жировые клетки, оказывающие регенеративное действие. Для профилактики осложнений после липофилинга необходимо соблюдать приведенные принципы введения жировой ткани.

Детальное описание особенностей техники вы полнения липофилинга молочных желез, голеней и ягодиц, коррекции рубцовых деформаций, осложнений, течения послеоперационного периода и результатов операций будет дано в последующих статьях цикла.

ЛИТЕРАТУРА

1. Coleman SR, Mazzola RF. Fat injection: from filling to regeneration. St Louis: Quality Medical Publishing, 2009.

2. Coleman SR. The technique of periorbital lipoinfiltration. Open Tech Plastic Surg
1994;1:120—126,.

3. Coleman SR. Facial recontouring with lipostructure. Chin Plast Surg 1997;24:347—367.

4. Coleman SR. Structural fat grafting. St Louis: Quality Medical Publishing, 2004, 30–73.

5. Sasaki GH. Water-assisted liposuction for body contouring and lipoharvesting: safety and efficacy in 41 consecutive patients. Aesthetic Surg J 2011;31:76—88.

6. Jewell ML, Fodor PB, de Souza Pinto EB, Al Shammari MA. Clinical application of VASER assisted lipoplasty: a pilot clinical study. Aesthetic Surg J 2002;22:131—146.

7. Khouri RK, Eisenmann-Klein M, Cardoso E, et al. Brava and autologous fat transfer Is a safe and effective breast augmentation alternative: results of a 6-year, 81-patient, prospective multicenter study. Plast Reconstr Surg J 2012;129:1173—1187.

8. Moseley TA, Zhu M, Hedrick MH. Adipose-derived stem and progenitor cells as fillers in plastic and reconstructive surgery. Plast Reconstr Surg J 2006;118(3Suppl):121S—128S.

9. Mentz HA, Ruiz-Razura A, Newall G, et al. Pectoral etching: a method for augmentation, delineation, and contouring the thoracic musculature in men. Plast Reconstr Surg 2007;120:2051—2055.

10. Nguyen AT, Rohrich RJ. Liposuction-assisted posterior brachioplasty: technical refinements in upper arm contouring. Plast Reconstr Surg 2010;126:1365—1369.

11. Horn G. A new concept in male reshaping: anatomical pectoral implants and liposculpture. Aesthetic Plast Surg 2002;26:23—25.

12. Hoyos A, Perez M. Dynamic-definition male pectoral reshaping and enhancement in slim, athletic, obese and gynecomastic patients through selective fat removal and grafting. Aesthetic Plast Surg 2012Oct;36(5):1066—1077.

13. Coleman SR. Structural fat grafting: more than a permanent filler. Plast Reconstr Surg 2006Sep;118(3Suppl):108S—120S.

14. Petrou I. Fat grafting can provide better facial rejuvenation than fillers, surgeon says. Cosmetic Surgery Times J 2012.

15. Bucky LP, Kanrhwala SK. The role of autologous fat and alternative fillers in the aging face. Plast Reconstr Surg 2007;l20(Suppl.):89S—97S.

16. Kanchwala SK., Holloway L., Bucky LP. Reliable soft tissue augmentation:a clinical comparison
of injectable soft-tissue fillers for facial-volume augmentation. Ann Ptast Surg 2003;53:30 35; discussion 35.

17. Gir P, Brown SA, Oni G, et al. Fat grafting: evidence based review on autologous fat harvesting, processing, reinjection, and storage. Plast Reconstr Surg 2012;130:249—258.

18. Rohrich RJ, Morales DE, Krueger JE, et al. Comparative lipoplasty analysis of in vivo-treated adipose tissue. Plast Reconstr Surg 2000;105:2152— 2158; discussion 2159–2160.

19. Padoin AV, Braga-Silva J, Martins P, et al. Sources of processed lipoaspirate cells: Influence of donor site on cell concentration. Plast Reconstr Surg.2008;122:614—618.

20. Ozsoy Z, Kul Z, Bilir A. The role of cannula diameter in improved adipocyte viability: a quantitative analysis. Aesthetic Surg J 2006;26:287—289.

21. Erdim M, Tezel E, Numanoglu A, Sav A. The effects of the size of liposuction cannula on adipocyte survival and the optimum temperature for fat graft storage: an experimental study. J Plast Reconstr Aesthet Surg 2009;62:1210—1214.

22. Ferguson RE, Cui X, Fink BF, Vasconez HC, Pu LL. The viability of autologous fat grafts harvested with the LipiVage system: a comparative study. Ann Plast Surg 2008;60:594—597.

23. Pu LL, Cui X, Fink BF, Cibull ML, Gao D. The viability of fatty tissues within adipose aspirates after conventional liposuc-tion: a comprehensive study. Ann Plast Surg 2008;54:288—292; discussion 292.

24. Pu LL, Coleman SR, Cui X, Ferguson RE Jr, Vasconez HC. Autologous fat grafts harvested and refined by the Coleman technique: a comparative study. Plast Reconstr Surg 2008;122:932—937.

25. Crawford JL, Hubbard BA, Colbert SH, Puckett CL. Fine tuning lipoaspirate viability for fat grafting. Plast Reconstr Surg 2010;126:1342—1348.

26. Mendieta CG. The art of gluteal sculpting. St Louis: Quality Medical Publishing, 2011;206.

27. Gonzales R. Buttocks reshaping. Indexa Editora Ltda, 2006;274—275.

28. Khouri RK. Материалы презентации «Breast LipoSculpture Emerging Concepts & Techniques of 3D Grafting». III профессиональный форум «Ис кусство пластической хирургии», Экспоцентр Москва, 2009.

29. Boschert MT, Beckert BW, Puckett CL, Concannon MJ. Analysis of lipocyte viability after liposuction. Plast Reconstr Surg 2002;109:761—765; discussion 766–767.

30. Rose JG Jr, Lucarelli MJ, Lemke BN, et al. Histologic comparison of autologous fat processing methods. Ophthal Plast Reconstr Surg 2006;22:195—200.

31. Khater R, Atanassova P, Anastassov Y, Pellerin P, Martinot-Duquennoy V. Clinical and experimental study of autologous fat grafting after processing by centrifugation and serum lavage. Aesthetic Plast Surg 2009;33:37—43.

32. Rohrich RJ, Sorokin ES, Brown SA. In search of improved fat transfer viability: A quantitative analysis of the role of cen-trifugation and harvest site. Plast Reconstr Surg 2004;113:391—395; discussion 396–397.

33. Condé-Green A, de Amorim NF, Pitanguy I. Influence of decantation, washing and centrifugation on adipocyte and mesenchymal stem cell content of aspirated adipose tissue:A comparative study. J Plast Reconstr Aesthet Surg 2010;63:1375—1381.

34. Condé-Green A, Baptista LS, de Amorin NF, et al. Effects of centrifugation on cell composition and viability of aspirated adipose tissue processed for transplantation. Aesthet Surg J 2010;30:249—255.

35. Xie Y, Zheng D, Li Q, Chen H, Lei H, Pu LL. The effect of centrifugation on viability of fat grafts: An evaluation with the glucose transport test. J Plast Reconstr Aesthet Surg 2010;63:482—487.

36. Ozsoy Z, Kul Z, Bilir A. The role of cannula diameter in improved adipocyte viability: A quantitative analysis. Aesthet Surg J 2006;26:287—289.

37. Erdim M, Tezel E, Numanoglu A, Sav A. The effects of the size of liposuction cannula on adipocyte survival and the optimum temperature for fat graft storage: An experimental study. J Plast Reconstr Aesthet Surg 2009;62:1210—1214.

38. Fat and stem cells (part 1) breast and body: lipografting 15 years after! Session 22. 11th Anti Aging Medicine World Congress & Medispa. April, 4th to 6th, 2013 Monaco.

39. Zuk PA, Zhu M, Mizuno H, et al. Multilineage cells from human adipose tissue: implications for cell based therapies. Tissue Eng 2001;7:211—228.

40. Zuk PA, Zhu M, Ashjian P, et al. Human adipose tissue is a source of multipotent stem cells. Mol Biol Cell 2002;13:4279—4295.

41. Mizuno H, Zuk PA, Zhu M, et al. Myogenic differentiation by human processed lipoaspirate cells. Plast Reconstr Surg 2002;109:199—209.

42. Huang JI, Zuk PA, Jones NF, et al. Chondrogenic potential of multipotential cells from human adipose tissue. Plast Reconstr Surg 2004;113:585—594.

43. Tholpady SS, Llull R, Ogle RC, et al. Adipose tissue: stem cells and beyond. Clin Plast Surg 2006;33:55—62.

44. Rehman J, Traktuev D, Li J, et al. Secretion of angiogenic and antiapoptotic factors by human adipose stromal cells. Circulation 2004;109:1292—1298.

45. Hausman GJ, Richardson RL. Adipose tissue angiogenesis. J Anim Sci 2004;82:925—934. 46. Planat-Bernard V, Silvestre JS, Cousin B, et al. Plasticity of human adipose lineage cells toward endothelial cells: physiological and therapeutic perspectives. Circulation 2004;109:656—663. 47. Moon MH, Kim SY, Kim YJ, et al. Human adipose tissue derived mesenchymal stem cells improve postnatal neorevascularization in a mouse model of hind limb ischemia. Cell Physiol Biochem 2006;17:279—290.

48. Miranville A, Heeschen C, Sengenes C, et al. Improvement of postnatal neovascularization by human adipose tissue-derived stem cells. Circulation 2004;110:349—355.

49. Nakagami H, Maeda K, Morishita R, et al. Novel autologous cell therapy in ischemic limb disease through growth factor secretion by cultured adipose tissue-derived stromal cells. Arterioscler Thromb Vasc Biol 2005;25:2542—2547.

50. Kondo K, Shintani S, Shibata R, et al. Implantation of adipose-derived regenerative cells enhances ischemia-induced angiogenesis. Arterioscler Thromb Vasc Biol 2009;29:61—66.

51. Brown SA, Levi B, Lequeux C, et al. Basic science review on adipose tissue for clinicians. Plast Reconstr Surg 2010;126:1936—1946.